^ШХР: *http://www.veterinaryworld.org/tableofcontent.html
(http://www.veterinaryworld.org/tableofcontent.html)
^АВТ: Sharawi S.S.; Yousef M.R.; Al-Hofufy A.N.; Al-Blowi M.H.
^ЗГЛ: Isolation, Serological and Real time PCR diagnosis of
Peste Des Petites Ruminants virus in naturally exposed Arabian
Gazelle in Saudi Arabia [Диагностирование вируса чумы
мелких жвачных с помощью методов выделения, ELISA и ПЦР в
реальном времени у естественно инфицированной газели в
Саудовской Аравии. (Египет)]
^ВЫХ: Veterinary World, 2010; Vol.3,N 21. - P. 489-494
^ДАТ: 2010
^ПРМ: Bibliogr.:p.493-494
+Реферат:
^РЕФ: В апр. 2009 г. зарегистрированы случаи чумы мелких
жвачных (ЧМЖ) в стаде газелей, насчитывающем 33 гол. в
Саудовской Аравии. Несколько животных пало в течение 3 дн.
после проявления клинических признаков: лихорадки, одышки,
диареи. Эти животные не были вакцинированы против данного
заболевания и могли быть в контакте с овцами и козами, среди
которых отмечалось заболевание, схожее с ЧМЖ. У 1 газели с
тяжелыми клиническими признаками были взяты окуло-назальные
тампонные образцы (ОБ) и ОБ сыворотки крови. Признаки были
следующие: профузная диарея, бронхопневмония, катаральные
выделения из носа, корочки вокруг ноздрей, эрозии на губах,
внутренней поверхности губ, мягком и твердом небе с
серо-желтыми очагами, диффузная гиперемия носовой раковины,
глазные выделения, конъюнктивит. Для выделения вируса ЧМЖ
использовали монослойную культуру клеток Vero, метод ELISA с
иммуноулавливанием вирусного антигена (ИА-ELISA) и с
использованием специфических мышиных МА, конкурентный метод
ELISA (к-ELISA) с использованием вируснейтрализующих МА против
нуклеопротеина вирус ЧМЖ. Кроме того, для идентификации вируса
использовали ревертазную ПЦР в реальном времени (Р-ПЦР). При
микробиологическом исследовании не выявлено патогенных
бактерий и грибов. На 7-й день после инокуляции ОБ от газели в
культуру клеток Vero наблюдали округление клеток, проявление
ЦПД, типичное для вируса ЧМЖ и на 7-й день полное разрушение
монослоя. С помощью ИА-ELISA выявлен специфический антиген
вируса при исследовании окуло-назальных ОБ, однако ОБ
сыворотки крови были отрицательными в к-ELISA. В Р-ПЦР
получена положительная амплификация со всеми ОБ от больной
газели, ни с одним отрицательным контролем амплификации не
наблюдали. Итак, с помощью культурального метода, метода
ИА-ELISA и Р-ПЦР подтверждена циркуляция вируса ЧМЖ среди
дикой популяции жвачных, в частности, среди газелей в
Саудовской Аравии.
^TRN: 1169520
^ВИД: Статья из книги
^ЯЗК: Английский
+Индексирование:
^РУБ: 68_41_53_29_21
^УДК: 619:616.98:578.831.2-07:636.294
^ТЕР: ГАЗЕЛИ (Gazelles). ВИРУС ЧУМЫ МЕЛКИХ ЖВАЧНЫХ (PEST OF
SMALL RUMINANTS VIRUS) [PESTE DES PETITS RUMINANTS VIRUS
(PPR-VIRUS)]. ДИАГНОСТИКА (Diagnosis). ВЫДЕЛЕНИЕ
(ПРОЦЕСС). МЕТОД ELISA (ELISA). МОНОКЛОНАЛЬНЫЕ АНТИТЕЛА
(Monoclonal antibodies). PCR [АМПЛИФИКАЦИЯ IN VITRO;
ПОЛИМЕРАЗНАЯ ЦЕПНАЯ РЕАКЦИЯ; ПЦР; РЕАКЦИЯ ЦЕПНОЙ
ПОЛИМЕРИЗАЦИИ]. АРЕ [АРАБСКАЯ РЕСПУБЛИКА ЕГИПЕТ; ЕГИПЕТ].
ЧУМА МЕЛКИХ ЖВАЧНЫХ.
^РТЗ: MORBILLIVIRUS [МОРБИЛЛИВИРУСЫ]. PARAMYXOVIRIDAE
[ПАРАМИКСОВИРУСЫ]. АНТИЛОПЫ (Antelopes). АНТИТЕЛА
(Antibodies). АФРИКА (Africa). БЕЛКИ (PROTEINS)
[ПРОТЕИНЫ]. БЛИЖНИЙ ВОСТОК (Near East). ВИРУСНЫЕ БОЛЕЗНИ
ЖИВОТНЫХ [ВИРОЗЫ ЖИВОТНЫХ]. ВИРУСЫ ЖИВОТНЫХ (Animal
viruses). ГЛИКОПРОТЕИНЫ (GLYCOPROTEINS) [ГЛИКОПРОТЕИДЫ;
ГЛЮКОПРОТЕИДЫ]. ДИКИЕ ЖИВОТНЫЕ (Wild animals). ДИКИЕ
МЛЕКОПИТАЮЩИЕ. ЖВАЧНЫЕ [RUMINANTIA]. ИММУНОГЛОБУЛИНЫ
(IMMUNOGLOBULINS). ИММУНОЛОГИЧЕСКИЕ МЕТОДЫ (Immunological
techniques) [СЕРОЛОГИЧЕСКИЕ МЕТОДЫ; СЕРОЛОГИЧЕСКИЕ
РЕАКЦИИ]. ИММУНОФЕРМЕНТНЫЕ МЕТОДЫ (Immunoenzyme
techniques). ИНФЕКЦИОННЫЕ БОЛЕЗНИ ЖИВОТНЫХ. КОПЫТНЫЕ
(Ungulates) [UNGULATA]. МЕТОДЫ (Methods). МЛЕКОПИТАЮЩИЕ
(Mammals) [MAMMALIA]. МОЛЕКУЛЯРНО-ГЕНЕТИЧЕСКИЕ МЕТОДЫ.
ПАРНОКОПЫТНЫЕ [ARTIODACTYLA; ПАРНОПАЛЫЕ]. ПЕПТИДЫ
(PEPTIDES). СЕВЕРНАЯ АФРИКА (North Africa).
СРЕДИЗЕМНОМОРЬЕ [СТРАНЫ СРЕДИЗЕМНОМОРЬЯ]. СТРАНЫ МИРА.
ТЕХНОЛОГИЧЕСКИЕ ПРОЦЕССЫ (Operational processes). ФАКТОРЫ
ИММУНИТЕТА (IMMUNOLOGICAL FACTORS) [ИММУНОЛОГИЧЕСКИЕ
ФАКТОРЫ].